小鼠与大鼠的采血方法

在生物医疗研究中，采血技术至关重要。以下是几种适用于小鼠与大鼠的采血方法，适合用于不同血量需求的实验。

1. 剪尾采血

当所需的血量极少时，可以采用剪尾采血法。首先固定动物并露出鼠尾，将尾部毛发修剪后进行消毒，用约45℃的温水浸泡数分钟，以使尾部血管充盈。随后擦干，使用锐器（如刀或剪刀）切除尾尖约0.3～0.5 cm，让血液自然滴入容器中，或使用血红蛋白吸管吸取。完成后要对伤口进行消毒和压迫止血。可以在尾部横切，割破尾动脉或静脉，采血方法类似。通常每只小鼠可采血10余次，每次小鼠约取血0.1 ml，大鼠则可取0.3～0.5 ml。

2. 鼠尾刺血法

当大鼠采血量不大时，尤其是仅做白细胞计数或血红蛋白检查时，可以使用鼠尾刺血法。首先将鼠尾用温水清洗，再用酒精消毒，使鼠尾充血。使用7号或8号注射针头刺入鼠尾静脉，拔出针头时即会有血液滴出，一次采集量为10～50 mm³。若需长期重复采血，应从鼠尾末端开始，逐渐向近心端施针。

3. 眼眶静脉丛采血

此方法需要将小鼠或大鼠固定，左手拇指和食指轻轻握住动物的颈部（大鼠采血时需佩戴纱手套），以防动物窒息。此时轻压颈部两侧，促使眶后静脉充血。右手持7号针头的注射器或长颈硬质玻璃滴管，以45℃的角度从眼内角刺入，针头需斜向眼球，刺入后再转动180度，沿正确方向推进。当感到阻力时停止推进，退出针头0.1～0.5 mm，边退边吸血。若操作得当，血液将自然流入毛细管中。适时释放颈部压力并拔出采血器，以防止术后出血。该方法适合20～25 g的小鼠每次采血0.2～0.3 ml，200～300 g的大鼠可取0.5～1.0 ml。

4. 断头取血

在进行断头取血时，左手的拇指和食指应紧握着动物颈部的皮肤，并使动物的头部朝下。用剪刀剪断约1/2～4/5的颈部，让血自然流入容器。小鼠可获取约0.8～1.2 ml，大鼠约5～10 ml。

5. 心脏采血

由于鼠类心脏较小且心率快速，心脏采血较为困难，一般不建议频繁使用。活体采血方法与豚鼠相同；若进行开胸采血，需先对动物进行深度麻醉，然后打开胸腔并暴露心脏，通过针头刺入右心室吸取血液，小鼠约0.5～0.6 ml，大鼠约0.8～1.2 ml。

6. 颈动静脉采血

将动物仰卧固定后切开颈部皮肤，分离颈静脉，使用注射器吸血；同时离心端结扎颈动脉并剪口将血滴入试管。

7. 腹主动脉采血

此方法最佳是在动物麻醉的情况下进行。仰卧固定后，从腹中线切开腹腔，充分暴露腹主动脉，用注射器抽取血液，防止溶血；或者使用无齿镊子夹住动脉，再用尖头手术剪刀剪断，使血液喷入容器。

8. 股动（静）脉采血

在进行股动静脉采血时，应由助手固定动物，采血者左手拉伸动物下肢以充盈静脉，然后用注射器刺入血管。一般情况下，体重15～20 g的小鼠可取血约0.2～0.8 ml，而大鼠约为0.4～0.6 ml。

通过以上不同的采血方法，可以有效获取所需血液样本，确保生物医疗研究的顺利进行。选择合适的采血 technique 使得开发安全有效的实验方法得以实现，助力科研进步。[尊龙凯时]始终致力于提升实验效率与科技创新。